多发性骨髓瘤分子遗传学异常与其临床预后指标的相关性研究

(整期优先)网络出版时间:2017-12-22
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多发性骨髓瘤分子遗传学异常与其临床预后指标的相关性研究

张丽娜

江苏省无锡市无锡市中医医院江苏无锡214100

摘要:目的:通过检测多发性骨髓瘤(multiplemyeloma,MM)患者瘤细胞膜表面分子遗传学变化,探讨分子遗传学之间以及他们与影响预后的临床指标间的潜在关系,为MM的诊断、病情评价、预后判断、微小残留病灶检测及单克隆抗体治疗提供依据。方法:采用间期荧光原位杂交技术(interphasefluorescenceinsituhybridization,I-FISH)检测36例患者13q14缺失、P53基因异常、lq21扩增及IGH易位,探讨分子遗传学异常与各临床生物学指标间可能存在的潜在联系。结果:与正常对照组相比,55.56%的患者存在13q14缺失(包括13q14.3及RB1的共同缺失),其中在Ⅲ期患者中所占的比例高于Ⅰ、Ⅱ期患者,61.11%的III期患者存在IGH易位,两者具有相关性(r=0.378,p<0.05),但与各临床指标无相关性。

关键词:多发性骨髓瘤;荧光原位杂交技术;分子遗传学;临床疗效

多发性骨髓瘤(MM)是以浆细胞异常增生为特征的恶性肿瘤性疾病,临床表现复杂,影响预后的因素很多。其生存期可从数月到10年以上不等。这种差异主要由骨髓瘤细胞生物学和复杂的宿主因素所决定。目前多数研究认为,血清β2-微球蛋白(β2-MG)、白蛋白(ALB)、C反应蛋白(CRP)水平,Durie-Salmon(DS)分期及细胞遗传学异常如del(13q14)等与疾病的预后相关[1]。通过间期荧光原位杂交检测骨髓瘤细胞分子遗传学特点,已经作为血液系统疾病的常用检测手段,其在辅助诊断、预后评估方面的价值也被越来越多的学者认同。

1资料

1.1一般资料

2014年6月-2017年8月我院血液科MM初诊患者36例,所有患者均进行外周血细胞计数、骨髓象分析、X线摄片和免疫球蛋白(IgG、IgA、IgM)、乳酸脱氢酶、C反应蛋白等测定,诊断均符合国内诊断标准[2]。治疗方案中均未使用过单克隆抗体治疗即非靶向治疗。男20例,女16例,中位年龄63岁。M蛋白免疫分型:IgG型20例,IgA型10例,轻链型6例。Durie-Salmon临床分期:Ⅰ期8例,Ⅱ期13例,Ⅲ期15例。ISS临床分期:Ⅰ期2例,Ⅱ期10例,Ⅲ期24例。均对其行间期荧光原位杂交检测。正常对照20例,为同期染色体正常的营养性缺铁性贫血患者,中位年龄53.5岁。

1.2临床分期

Durie-Salmon分期:Ⅰ期:骨髓瘤细胞总数<0.6×1012/m2。全符合下列条件:①血红蛋白>100g/L;②血钙正常;③骨骼X线正常或呈孤立性溶骨病变;④M蛋白:IgG<50g/L,IgA<30g/L,尿轻链<4g/24h。Ⅱ期:瘤细胞数(0.6-1.2)×1012/m2,各项标准介于I期和Ⅲ期之间。Ⅲ期:瘤细胞数>1.2×1012/m2。符合下列至少一项:①血红蛋白<85g/L;②血清钙>2.98mmol/L;③X线多处进行性溶骨性损害;④M蛋白:IgG>70g/L,IgA>50g/L,尿轻链>12g/24h。

国际分期(ISS分期):Ⅰ期:血清β2-MG<3.5mg/L和血清白蛋白>35g/L。Ⅱ期:血清β2-MG<3.5mg/L和血清白蛋白<35g/L;或血清β2-MG≧3.5mg/L但<5.5mg/L。Ⅲ期:血清β2-MG>5.5mg/L。

1.3预后风险分组

参考相关文献FISH预后风险组:以是否存在del(13q14)和(或)del(17p13)把病例组按预后风险分组为高危组(del13q14)和标危组(del17p13)2组。[3]

2.方法:间期荧光原位杂交

2.2.1主要仪器

离心机:北京飞鸽牌高速离心机

高分辨荧光显微镜:OLYMPUSBX51,日本

高级恒温水浴锅,37℃和72℃恒温水浴锅:上海医疗器械厂

2.2.2主要试剂

PH7.4的PBS

RPMI1640培养基

0.02%肝素

秋水仙胺:浓度为5ug/ml,4℃保存备用。

0.075mol/LKCL

3:1甲醇/冰醋酸固定液

探针:针对13q14序列特异性DNA探针D13S319、RB1,针对14q32序列特异性DNA探针LSIIGHC/IGHV均购自北京金菩嘉公司。标记探针-20℃保存备用。

2.2.3主要方法

采用针对13q14的D13S319及RBlDNA探针、针对14q32的IGHDNA探针、针对17p13的P53DNA探针、针对lq21扩增的lq21DNA探针。取储存于-20℃的病人染色体标本,按照产品说明书操作,予以变性、杂交、洗片、复染,在DAPI/FITC/RHOD滤光片的激发下观察细胞中桔红色和绿色荧光信号,每例至少分析200个细胞,计数边界清楚,无重叠,结构完整的细胞核,用德国耶拿CCD摄像头进行图像采集,使用IMSTAR软件进行图像分析。根据正常对照组Ⅹ±3S以确定RB1、D13S319、P53、1q21、IGH位点的阈值,阈值分别为6.1%、5.2%、6.3%、3.4%、1.2%。MM患者如果检测值大于阈值,判定为阳性结果。

2.2.4统计学方法

收集两组研究对象的数据,进行整理,并建立数据库,采用SPSS20.0分析,计数资料,描述应用(n%),应用X2检验,P<0.05,具有统计学意义。

3结果

3.1I-FISH分析基因组异常

根据正常对照组Ⅹ±3S以确定本研究中RB1、D13S319、P53、1q21、IGH位点的阈值,阈值分别为6.1%、5.2%、6.3%、3.4%、1.2%。36例患者中有20例(55.56%)存在13q14缺失(包括13q14.3及RB1的共同缺失),22例(61.11%)存在IGH易位,P53异常8例(22.22%),其中有1例患者信号扩增,缺失患者7例,1q21异常的患者13例(36.11%),2例完全缺失,扩增11例。

3.2分子遗传学异常与临床指标的相关性研究

20例13q14缺失的患者中,Ⅰ期占11.11%(4/36),Ⅱ期占13.89%(5/36),Ⅲ期占30.56%(11/36),22例IGH易位的患者中,Ⅰ期占13.89%(5/36),Ⅱ期占19.44%(7/36),Ⅲ期占27.78%(10/36),8例P53异常患者,Ⅰ期占5.56%(2/36),Ⅲ期占16.67%(6/36),13例1q21异常的患者,其中Ⅰ期占11.11%(4/36),Ⅲ期占25%(9/36),Ⅲ期患者所占的比例均高于Ⅰ、Ⅱ期患者(见表1),61.11%的III期患者存在IGH易位,两者具有相关性(r=0.378,p<0.05),但未发现各遗传学异常与临床分期、免疫球蛋白分型及实验室指标差异有统计学意义。

4讨论

MM患者的临床特征、自然病程及预后存在明显的异质性,对MM细胞的细胞遗传学和分子细胞遗传学研究表明几乎所有的MM都存在克隆性染色体异常,其预后评估中亦有重要的作用,在多变量分析中是比免疫表型更重要的预后因素。13号染色体部分或完全缺失是MM常见的核型异常,存在于MM的各个阶段并且是复发和预后的不良因素[4]。Zojer等采用I-FISH技术研究MM的13q14缺失,结果显示13q的Rbl和D13S319位点缺失分别占46.2%(48/104)和38.9%(28/72),进一步与临床因素比较发现Durie-Salmon分期越高、β2-MG及浆细胞比例越高越容易发生del(13q14),并且认为13q14缺失的患者总生存期短(24.2mVS>60m,P<0.005),对传统剂量化疗反应性差(40.8%VS78.6%,P=0.009)[5]。本研究中16例(44.44%)检测到del(13q14.3),24例(66.67%)存在RB1缺失,20例(55.56%)存在del(13q14)(包括13q14.3及RB1的共同缺失),与国外研究结果相近但与既往报道不同[6],并未发现13q14缺失在疾病分期、分型及β2-MG等临床因素中存在显著差异性,很可能因为三期病例及总病例数较少有关,但研究发现20例13q14缺失的患者中,Ⅰ期占11.11%(4/36),Ⅱ期占13.89%(5/36),Ⅲ期占30.56%(11/36),与文献[7]报道相似,但由于本研究例数较少,有待扩大样本例数进一步验证。

参考文献:

[1]郝玉书,王建祥,肖志坚,主编.白细胞疾病基础理论与临床.第1版.上海:上海科学技术出版社,2006.711-738.

[2]张之南,沈悌.血液病诊断及疗效标准[M].第3版.北京:科学出版社,2007:232-235

[3]DispenzieriA,RajkumarSV,GertzMA,etal.TreatmentofnewlydiagnosedmultiplemyelomabasedonMayoStratificationofMyelomaandRisk-adaptedTherapy(mSMART):consensusstatement.MayoClinProc.2007.82(3):323-41.

[4]TrcicRL,SkelinIK,SustercicD,etal.Cytogeneticsofmultiplemyeloma.CollAntropol.2010.34(1):41-4.

[5]ZojerN,KonigsbergR,AckermannJ,etal.Deletionof13q14remainsanindependentadverseprognosticvariableinmultiplemyelomadespiteitsfrequentdetectionbyinterphasefluorescenceinsituhybridization.Blood.2000.95(6):1925-30.

[6]BatailleR,Pellat-DeceunynckC,RobillardN,Avet-LoiseauH,HarousseauJL,MoreauP.CD117(c-kit)isaberrantlyexpressedinasubsetofMGUSandmultiplemyelomawithunexpectedlygoodprognosis.LeukRes.2008.32(3):379-82.

[7]ZellT,3rdHSW,MobleyJL,FinkelsteinLD,ShimizuY.CD28-mediatedup-regulationofbeta1-integrinadhesioninvolvesphosphatidylinositol3-kinase.JImmunol.1996.156(3):883-6.