四川宜宾高洲酒业有限责任公司,四川宜宾 645150
摘 要:己酸乙酯是浓香型白酒的主体香味物质,其合成的关键酶为酯酶,因此研究酯酶的特性对浓香型白酒具有重要的意义。以浓香型大曲为研究对象,对其中的酯化酶进行分离纯化,并对其酶学特性的研究。
关键词:己酸乙酯;酯酶;白酒
己酸乙酯是浓香型白酒的主体香味物质[1],如何提高原酒中己酸乙酯的含量,是解决浓香型白酒生产的瓶颈提高浓香型白酒质量的关键[2-7]。
3.1.1酯酶(Esterase,EC,.1)亦称羧基酯酶,是指可以水解羧酯键的酶,但该酶也能催化合成低级脂肪酸酯,由于该酶既能催化酯的合成,也能催化酯的分解,因此,白酒业习惯分别称为酯化酶和酯分解酶。
己酸和乙醇在酯化酶作用下合成己酸乙酯,是己酸乙酯合成的主要途径;酯酶主要是由大曲发酵过程中由微生物代谢产生的[8-11]。因此,对大曲中酯酶的分离纯化及酶学特性具有重要的意义。
本研究以浓香型大曲为研究对象,对其中的酯化酶进行分离纯化,并对其酶学特性的研究。
1材料与方法
1.1试验材料
1.1.1酯酶的提取和纯化
(1)样品来源
浓香大曲由四川宜宾高洲酒业有限责任公司提供。
(2)试剂
己酸、无水乙醇,购于Sigma公司;冰冻离心机;751型分光光度计;电磁搅拌器;组织捣碎机;天平;量筒;移液管;烧杯;透析袋;硫酸铵;0.lmol/L 磷酸钠缓冲液,pH7.0。
(3)仪器
蛋白分离纯化系统,瑞典GEAKTA purifier100;UV-2100型分光光度计,尤尼柯仪器有限公司;冷冻离心机,美国Beckman Coulter公司;数显恒温水浴锅,金坛市正基仪器有限公司;PB-10pH计,Sartorius公司;ALPHAI-5真空冷冻干燥仪,德国Christ公司;层析柱,上海华美实验仪器厂。
1.1.2酯酶特性研究
(1)试剂
乙酸、乳酸、丁酸、戊酸、己酸、庚酸、辛酸,色谱纯,Acros Organics。
(2)主要试验设备及仪器
气相色谱仪 PerkinElmer 配有FID捡测器。
2.2试验方法
2.2.1酯酶酶活力定义及测定方法
由于白酒发酵时间较长(在25天以上),大曲的用量较大(原料量10%左右/以上);且在发酵过程中,以粗酶制剂(反应体系中原料、菌体、酶相互作用)的形式进行酶促反应的;发酵过程,酯酶作用温度在30℃左右;发酵过程中酒精浓度可达10%以上,相当于水溶液中乙醇浓度为15%左右。
30℃因此,为了更好的指导生产,将酯酶活力定义为:1mg酶制剂在模拟白酒发酵反应体系(1%己酸,15%无水乙醇,5%酯酶制剂,79%蒸馏水)中,酯化120h后,用气相色谱法测定反应体系中己酸乙酯的浓度,每生成1ppm己酸乙酯定义为1酶活力单位,用u表示。
2.2.2蛋白质含量测定
用考马斯亮兰G-250法测定不同提取及纯化阶段的蛋白质含量,以牛血清蛋白作标准。
2.2.3酯化率及相对酯化率
由于目前关于酶活的定义并不统一,因此在进行酶学特性研究时,以酯化率作为酶促反应进行的度量标准,同时为了更好的比较,引入相对酯化率。酯化率和相对酯化率定义如下:
酯化率=生成酯的摩尔量/添加酸的摩尔量*100%。
相对酯化率=各反应的酯化率/本次试验的最大酯化率,其中最大酯化率定义为100%。
2.2.4酯酶的分离纯化
(1)提取
4℃按大曲:水=1:5加入预先冷却的蒸馏水,在预冷的组织捣碎机中捣碎匀质,置于下浸提1h,用4层纱布过滤,滤液于15000rpm冷冻离心15min,取上清液。
(2)纯化
a.盐析:在冰浴中缓缓加入硫酸铵,使其最终浓度为80%,18000rpm冷冻离心,离心10min,弃去上清液;
4℃b.透析:复溶于pH为7.0的磷酸钠缓冲溶液,装入透析袋,下透析,直至无硫酸根离子析出为止(用BaCl2溶液检查);
1.6cm20cmc.离子交换:透析完毕后,用DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换层析(Φ×),平衡缓冲液为pH为7.0的磷酸钠缓冲溶液,280nm下检测吸光值,取不同吸光值的流分;
d.判定:重复步骤a和步骤b,测定酶活,取目标组分,进行冷冻干燥,即得酯化酶。
2.2.5酯酶酶学特性研究
2.2.5.1酯酶对不同酸与乙醇酯化能力大小的研究(底物专一性)
30℃分别吸取乙酸、乳酸、丁酸、戊酸、己酸、庚酸、辛酸各1mL于100mL锥形瓶中,加入15mL无水乙醇,分别加入酯化酶1mg,用蒸馏水将其定容到100mL,下酯化120h后,测定反应体系中各种酯的含量,并计算酯化率和相对酯化率。试验3个水平,取平均值。
2.2.5.2酯酶对白酒四大酸酯化的选择性(优先选择性)
30℃分别吸取乙酸、乳酸、丁酸、己酸各0.25ml于100mL锥形瓶中,加入15mL无水乙醇,分别加入酯化酶1mg,用蒸馏水将其定容到100mL,下酯化120h后,测定反应体系中各种酯的含量,并计算酯化率和相对酯化率。做三次重复试验,取平均值。
2.2.5.3对于酯酶催化合成己酸乙酯随时间的变化情况
30℃吸取己酸1.0mL于100ml锥形瓶中,加入15mL无水乙醇,加入酯化酶1mg,用蒸馏水定容到100ml,分别置于下酯化,每隔24h测定反应体系中己酸乙酯的含量,并计算酯化率和相对酯化率。做三次重复试验,取平均值。
2.2.5.4不同乙醇浓度对于酯酶催化合成己酸乙酯的影响
30℃分别吸取己酸1mL于100mL锥形瓶中,依次加入6、8、10、12、14、16、18、20、22mL无水乙醇,分别加入酯化酶1mg,用蒸馏水将其定容到100mL,下酯化120h后,测定反应体系中己酸乙酯的含量,并计算酯化率和相对酯化率。做三次重复试验,取平均值。
2.2.5.5不同己酸浓度对酯酶催化合成己酸乙酯的影响
30℃分别吸取己酸0.5、1.0、1.5、2.0、2.5mL于100ml锥形瓶中,加入15mL无水乙醇,分别加入酯化酶1mg,用蒸馏水将其定容到100mL,下酯化120h后,测定反应体系中己酸乙酯的含量,并计算酯化率和相对酯化率。做三次重复试验,取平均值。
2.2.5.6温度对于酯酶催化合成己酸乙酯的影响
吸取己酸1.0mL于100mL锥形瓶中,加入15mL无水乙醇,加入酯化酶1mg,用蒸馏水定容到100ml,分别置于25、30、35、40、45℃下酯化120h后,测定反应体系中己酸乙酯的含量,并计算酯化率和相对酯化率。做三次重复试验,取平均值。
2.2.5.7酯酶的热稳定性
85℃将酯酶接种到没有底物的反应体系中,分别置于45~下保持2min,加入反应底物,测定酯酶活力。做三次重复试验,取平均值。
2.2.6己酸酸乙酯测定方法
酯化后,将整个反应溶液倒入500ml的圆底烧瓶中,加入100ml 蒸馏水进行蒸馏,收集100ml馏分,用气相色谱测定其中己酸乙酯的含量。
气相色谱条件如下:
50m0.25mm毛细管柱:CP-WAX 57:×色谱柱
240℃260℃进样口温度:,检测器温度:,载气:氮气(1 ml /min)
30℃4℃60℃10℃130℃15℃205℃色谱柱升温程序:保温4 min,/ min升温至,/ min升到,/ min升温至保温15 min。
2 结果与分析
2.1酯酶纯化
大曲酯酶按本实验条件经匀质提取,过滤,硫酸铵盐析,DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换,透析和冷冻干燥后,得到纯化后的酯酶,相关指标见表1。从表1可以看出,酯酶的纯化倍数为32.21倍,酶活力回收率为36.19%。
表1 酯酶的分离纯化结果
步骤 | 总蛋白质/g | 总酶活/u | 比活力(u/g) | 酶活力回收率(%) | 纯化倍数 |
大曲 | 11.75 | 3165.43 | 269.40 | 100.00 | 1.00 |
提取液 | 9.79 | 2737.86 | 279.61 | 86.49 | 1.04 |
盐析 | 4.57 | 2464.07 | 539.18 | 77.84 | 2.00 |
离子交换 | 0.18 | 1267.25 | 7040.28 | 40.03 | 26.13 |
成品 | 0.13 | 1145.56 | 8678.48 | 36.19 | 32.21 |
2.2酶学特性研究
2.2.1酯酶对不同酸与乙醇酯化能力大小的研究(专一性)
在反应体系中分别单独加入不同种类的酸,加入酯化酶进行酯化反应,反应结束后测定酯化率和相对酯化率,结果见图1。
由试验结果可以看出,除乳酸外,酯酶对乙酸、丁酸、戊酸、己酸、庚酸、辛酸的酯化率随分子量的增大而逐渐增大,这可能因为乳酸的支链结构,阻碍了酯化过程。
图1 酯酶对白酒中不同酸类的相对酯化率
注:以酯化率最高的辛酸的酯化率为对照(相对酯化率100%),其它与其相比较,以下试验均取酯化率最高的作为对照。
2.2.2酯酶对白酒四大酸酯化的选择性(选择性)
在反应体系中添加与白酒四大酯对应的酸类物质,加入酯化酶进行酯化反应,反应结束后测定酯化率和相对酯化率,试验结果见图2。
图2 混合条件下酯酶对白酒中四大酯的相对催化率
从图2可以看出,在白酒四大酯类相对应的酸类物质乙酸、乳酸、丁酸、己酸同时存在的情况下,酯酶优先催化合成己酸乙酯,且相对酯化率要明显高于单独催化时的相对酯化率,这与大曲的试验结果一致。说明,在白酒发酵体系中,酯酶优先催化合成己酸乙酯,且催化合成以己酸乙酯为主。
而己酸乙酯又为浓香型白酒的特征风味,因此大曲中酯酶对与浓香型白酒己酸乙酯含量具有重要作用。因此,以下将结合浓香型白酒实际生产的工艺,重点研究浓香型大曲中酯酶对己酸的催化特性。
2.2.3时间对于酯酶催化合成己酸乙酯的影响
在反应体系中加入己酸,加入浓香型大曲中提取的酯化酶进行酯化,于不同时间测定反应体系中己酸乙酯的含量,并计算酯化率和相对酯化率,结果见图3。
从图3可以看出,在72h之前,酯化反应的速度是基本恒定的,72h以后,酯化速度随反应时间的延长而降低,120h后反应基本结束。因此取120h为以下研究的反应时间。
图3 酯化率随反应时间的变化情况
2.2.4不同乙醇浓度对于酯酶催化合成己酸乙酯的影响
为了进一步弄清乙醇对酯化反应的影响,改变反应体系中乙醇的浓度,进行酯化,酯化结束后,测定己酸乙酯含量,并计算酯化率和相对酯化率,结果见图4。
从图4可以看出,酯酶对己酸的酯化能力受乙醇的影响较大。在乙醇浓度为10%以下时,酯酶催化合成己酸乙酯的能力随乙醇浓度的增加而提高,这可能是由于乙醇浓度的提高致使底物浓度的提高,促使反应向酯化方向进行。当乙醇大于10%时,酯酶催化合成己酸乙酯的能力随乙醇浓度的增加而呈减少趋势,这一方面是由于底物浓度的饱和致使酯酶酯化反应速率趋于恒定,另一方面,随着乙醇浓度的增加,导致反应体系极性的变化,就导致酯酶空间结构的变化,从而使其催化活力降低。因此,在浓香型白酒酿造时,酒醅中乙醇浓度达到10%时,为控制己酸乙酯含量的重要控制点。
图4 不同酒精浓度下酯酶对己酸的相对酯化率
2.2.5不同己酸浓度对酯酶催化合成己酸乙酯的影响
为了进一步弄清乙酸对酯化反应的影响,改变反应体系中乙酸的浓度,进行酯化,酯化结束后,测定己酸乙酯含量,并计算酯化率和相对酯化率,结果见图5。
由试验结果可以看出,随己酸浓度的增加,酯酶催化合成己酸乙酯的量也呈先增加后减少的趋势,并不符合典型的米氏方程,最适宜的己酸浓度为1%。当己酸浓度大于1%时,酯酶催化合成己酸乙酯的含量随己酸量的增加呈逐渐减少趋势,这可能是由于在水溶液反应体系下,当己酸含量增加到一定程度后,将对酯酶的空间结构产生影响,从而对酯酶的活性产生抑制。
图5 不同己酸浓度下己酸乙酯相对酯化率
2.2.6温度对于酯酶催化合成己酸乙酯的影响
温度,是白酒酿造过程中一个很重要的控制指标。为了更好的通过控制温度来控制己酸乙酯含量,将酯化体系置于不同的温度下进行酯化,酯化结束后测定体系中己酸乙酯含量,并计算酯化率和相对酯化率,结果见图6。
图6 不同温度下己酸的相对酯化率
50℃40℃40℃60℃30℃从图6可以看出,酯化率随温度的变化呈近似的正态分布趋势,最适宜的催化温度在35~之间,以下时,反应速度随温度的升高而增加,以上时,反应速度随温度的升高而降低,在仍有23%的相对酯化率,在发酵过程中的酯化温度下,相对酯化率为58%。
3小结
以浓香型大曲为研究对象,对其中的酯化酶进行分离纯化,并对其酶学特性的研究,得到如下结论。
(1)对浓香型大曲中催化合成己酸乙酯的酯酶进行分离纯化,样品经匀质提取,过滤,硫酸铵盐析,DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换,透析和冷冻干燥后,酶活纯化倍数为32.21倍,酶活保留率为36.19%。
(2)以浓香型大曲中酯酶为研究对象,与白酒生产实际相结合,研究了其酶学特性。包括,催化己酸和乙醇合成己酸乙酯随时间变化趋势,对酸类底物的专一性、优先选择性,底物浓度(乙醇浓度、乙酸浓度)对己酸酯化率的影响,以及温度对酯化率的影响。研究发现:
a.除乳酸外,酯化率随分子量的增大而逐渐增大,这可能与乳酸的结构有支链,阻碍了酯化过程。
b.在乙酸、乳酸、丁酸、己酸同时存在的情况下,酯化能力主要表现在己酸乙酯的酯化合成,说明酯化酶对浓香型白酒特征风味的生成具有关键作用。
c.在本试验条件下,在一定范围内,酯化酶对己酸乙酯的酯化率均随乙醇浓度和乙酸浓度增加而增加,超出一定的浓度范围则对酯化作用产生抑制,这可能是导致反应体系极性的变化从而导致酶活力中心结构的变化,进而影响酶的活力;在乙醇浓度为10%时,酯化率最大;在己酸浓度为1%(v/v)时,酯化率最大。
50℃d.不同催化温度和酶添加量对酯化酶催化合成己酸乙酯的影响。发现最适宜的酯酶添加量为5%,最适宜的催化温度为35~。
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